印跡法（Blotting）是指將樣品轉移到固相載體上，而后利用相應的探測反應來檢測樣品的一種方法。Western Blot是分子生物學、生物化學和免疫遺傳學中常用的一種實驗方法。

實驗結果展示：

WB（核蛋白）檢測服務注意事項

      蛋白樣品制備的注意事項：

       1、細胞數量達5×106

       2、將細胞裂解液再離心，收集上清液，加loading煮樣5min。

      SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳注意事項：

      1、做膠：防止漏膠、進氣泡以及花膠（水封、插梳子和拔梳子）

      2、加樣：兩邊加loading，加樣量一樣，加樣時間要盡量短，以免樣品擴散。

      3、電泳：將膠夾好放于電泳槽中，加電泳buffer（內外面不能聯通），將電壓調到90V開始電泳。

      轉膜注意事項：

       1、泡膜：轉膜之前將海綿、膠、膜都用預冷的轉移buffer浸泡20min。（1.凝膠若是沒在預冷的轉膜buffer中浸泡，就會在轉膜過程中出現凝膠皺縮，導致出現轉移條帶變形。2.PVDF膜具有疏水性，需用甲醇浸泡）

      2、轉膜順序：陰極碳板+海綿+三濾+膠+膜+三濾+海綿+陽極碳板

      3、轉膜條件：0.35A 250V 1h40min 冰浴中進行轉膜（具體轉膜時間要根據目的蛋白的大小而定；目的蛋白的分子量越大，需要的轉膜時間越長，反之則短）

      4、避免直接用手碰雜交膜，使用鑷子。因為手上的蛋白和油脂會影響轉膜效率并會使膜臟掉。

      5、夾好膜和凝膠后，確定在凝膠/膜和濾紙之間沒有氣泡存在，否則會導致轉膜不*。

      6、保證膜和濾紙的大小和凝膠*一樣，過大和過小都會影響轉膜效率。

      7、雞來源的抗體與PVDF和尼龍膜有較強的結合能力，從而產生較高的背景，故如果選擇雞來源的抗體最好使用硝酸纖維素膜（NC膜）

      關于磷酸化蛋白檢測的注意事項：

      1、保持待測蛋白處于磷酸化狀態(tài)！在標本提取液中加入足夠的磷酸酶抑制劑（NaF，可以防止去磷酸化），并將標本時刻保持在冰浴中！

      2、使用5%的BSA作為封閉試劑！不能使用脫脂奶粉！（因為脫脂奶粉中含有酪蛋白，會出現很高的背景）。

     抗體保存注意事項：

     1、收到抗體后按要求離心后再打開管蓋進行分裝盒保存！

     2、對于大部分抗體，比較合適的保存方式是分裝后保存在-20℃

   ①分裝的量以一次實驗用完為好，最少不能少于10μl每份。因為分裝體積越小，抗體的濃度越可能會受到蒸發(fā)以及管壁吸附的影響。

   ② 復融后的分裝抗體如果一次用不完，將剩余母液保存在4℃，避免再凍起來！

    ③絕對避免將抗體保存在自動除霜冰箱中。

    3、大部分抗體收到后4℃短暫保存1-2周對抗體活性是沒有影響的。